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Ni填料純化His標(biāo)簽蛋白的應(yīng)用案例及關(guān)鍵點(diǎn)


His標(biāo)簽由于其分子量小、與金屬離子結(jié)合能力強(qiáng)以及在變性條件下也可保持與介質(zhì)結(jié)合的特性,已成為最常用的親和標(biāo)簽。固定化金屬離子親和層析(IMAC)原理為:暴露在蛋白質(zhì)表面的某些氨基酸側(cè)鏈(主要是His,及少量的Cys和Trp),可與過渡金屬離子之間發(fā)生特定的可逆性相互作用,從而實(shí)現(xiàn)對蛋白的分離純化。金屬離子通常為Zn2+、Ni2+、Cu2+或Co2+,如今用Ni2+固定化金屬離子親和層析已成為純化組氨酸標(biāo)簽蛋白的標(biāo)準(zhǔn)方法。蛋白質(zhì)/肽與固定化金屬離子相互作用的強(qiáng)度取決于氨基酸側(cè)鏈的類型、數(shù)量和空間分布,以及所使用的金屬離子的性質(zhì)。



常見的Ni螯合方式:


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Ni填料在獸用亞單位疫苗的應(yīng)用


基因工程亞單位疫苗,在表達(dá)載體序列中加入His-tag標(biāo)簽以達(dá)到快速層析純化獲得目標(biāo)蛋白,發(fā)酵培養(yǎng)后通過金屬螯合親和層析填料Ni Chromstar FF或Ni Chromstar Excel一步層析純化即可獲得較高純度的目標(biāo)蛋白,經(jīng)Puredex G-25 M或UF/DF進(jìn)行緩沖液置換即可進(jìn)行制劑配苗。



典型案例:百林科Ni填料在重組亞單位疫苗的應(yīng)用:


某獸用亞單位疫苗案例


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由圖可知,發(fā)酵后菌體破碎澄清后經(jīng)一步Ni填料親和層析純化后,目標(biāo)蛋白純度高,后續(xù)經(jīng)濃縮與換液后即可進(jìn)行后續(xù)制劑配苗。



典型案例:百林科Ni填料在重組膠原蛋白的應(yīng)用:


大腸表達(dá)的重組膠原蛋白應(yīng)用案例


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由圖可知,重組膠原蛋白經(jīng)一步Ni Chromstar FF純化后可得較高純度蛋白洗脫液,后續(xù)經(jīng)Puredex G-25 M脫鹽換液后再進(jìn)行離子交換層析精純可得高純度重組膠原蛋白。



不同Ni螯合方式純化效果對比(另一重組膠原蛋白)


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1、Ni Chromstar FF與Ni Chromstar Excel均可用于純化重組膠原蛋白;


2、Ni Chromstar Excel洗脫純度明顯較Ni Chromstar FF高,對于雜質(zhì)的去除有顯著的改善效應(yīng)。


鑒于以上情況,Ni親和填料在各種重組蛋白項目上應(yīng)用較多,而實(shí)驗(yàn)中也會經(jīng)常遇到各種問題,該如何解決吶?以下匯總了常見問題以及對應(yīng)解決方法:


01、His標(biāo)簽蛋白與親和介質(zhì)不結(jié)合

① His標(biāo)簽未翻譯表達(dá)

解決思路:

? 使用Western blot方法檢測His標(biāo)簽是否表達(dá)

? 重新構(gòu)建目的蛋白分子,改變插入His標(biāo)簽的位置(C端或N端)


② His標(biāo)簽暴露不充分

解決思路:

? 向樣品中加入一定量變性劑(如:3~8 M尿素,3~6 M鹽酸胍等),再上樣純化

? 重新構(gòu)建目的蛋白分子,適當(dāng)增加組氨酸基團(tuán)個數(shù),或在His標(biāo)簽與目的蛋白之間加入一段Linker


02、His標(biāo)簽蛋白純化后純度低

① 介質(zhì)的離子交換作用,導(dǎo)致了非特異結(jié)合

解決思路:

? 在平衡液、樣品、洗脫液中,加入0.5 M NaCl,屏蔽介質(zhì)的離子交換作用


② 雜蛋白也能與金屬離子結(jié)合

解決思路:

? 調(diào)整樣品與介質(zhì)的結(jié)合條件,比如預(yù)先在樣品及平衡液中加入10~50 mM咪唑,屏蔽與介質(zhì)弱結(jié)合的蛋白

? 洗脫過程采用梯度洗脫方法,摸索最佳純度條件

? 嘗試其他金屬離子螯合親和層析介質(zhì)

? 在目的蛋白分子上額外構(gòu)建一個蛋白標(biāo)簽,如:GST標(biāo)簽,兩步純化目的蛋白,或銜接其他純化方法進(jìn)一步純化


③ His標(biāo)簽蛋白被降解

解決思路:

? 細(xì)胞破碎過程中釋放的蛋白酶可能會降解目的蛋白,導(dǎo)致帶有His標(biāo)簽的小片段產(chǎn)生,形成產(chǎn)品相關(guān)雜質(zhì),可以在處理樣品過程中加入一定量蛋白酶抑制劑

? 如果目的蛋白自身不穩(wěn)定,會發(fā)生降解,則需要摸索維持目的蛋白穩(wěn)定的最佳條件,包括溫度、緩沖液成分和操作時間等


03、His標(biāo)簽蛋白無法洗脫

① 目的蛋白與介質(zhì)結(jié)合能力過強(qiáng)

解決思路:

? 進(jìn)一步增加洗脫咪唑濃度,或同時適當(dāng)降低pH值

? 通過脫落金屬離子,進(jìn)行洗脫,可用pH值3.5條件或EDTA進(jìn)行洗脫


② 目的蛋白沉淀在層析柱內(nèi)

解決思路:

? 摸索維持目的蛋白穩(wěn)定的最佳條件,包括溫度、緩沖液成分和操作時間等

? 適當(dāng)降低上樣量

? 用變性劑洗脫,如8 M尿素或6 M鹽酸胍


04、層析介質(zhì)變色

① 介質(zhì)長期使用,出現(xiàn)白色

解決思路:

? 如果介質(zhì)長期使用,或單次使用上樣量較大時,會導(dǎo)致介質(zhì)金屬離子脫落,從而導(dǎo)致介質(zhì)變白,可通過介質(zhì)再生解決

? 如果介質(zhì)表面結(jié)合了大量目的蛋白,在純化過程中,會略顯白色,洗脫后顏色會恢復(fù),屬于正?,F(xiàn)象


② 介質(zhì)在純化過程中,出現(xiàn)棕色

解決思路:

? 介質(zhì)在純化過程中變成棕色,主要是受緩沖液或樣品中還原劑的影響,可以選擇去掉還原劑成分,或者使用Ni Chromstar Excel介質(zhì)


③ 介質(zhì)長期使用過程中,出現(xiàn)黃色

? 介質(zhì)在使用過程中,會積累非特異性吸附的雜質(zhì),包括蛋白、色素等。同時在層析柱頂端也會積累沉淀蛋白,長期使用后,就會出現(xiàn)介質(zhì)頂端發(fā)黃的現(xiàn)象。此時,往往伴隨著介質(zhì)載量降低、柱效降低、柱壓變大等情況??赏ㄟ^在位清洗方法,系統(tǒng)的對層析柱進(jìn)行清洗,解決這一問題,并建立合理的介質(zhì)壽命維護(hù)方法


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